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中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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9 _; D. X+ `1 `6 @0 _" A7 R+ J* ?; d' s 中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03# Z# x# d2 c: w4 ~# E! G
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) % ?( v9 r1 N1 L9 E! p
Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1. Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
; a: b5 N7 v; L; O 近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 4 ?* X3 Y" L" j- f
1 材料与方法 $ V5 c+ @: B) u
1.1 土壤样品 某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基 本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下: 1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。 2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L. 含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养 称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离 制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验 在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 ' D3 W( f# {' a1 [
表1 ZL1菌株正交试验方案及试验结果 0 U0 u: D( x, w$ \5 V
+ N# a! ?* E7 ?
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分组号
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测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
5 h, a. R4 @# z, |' J" ?( f) G: c降解测量ρ(油)/(mg.L-1)2 i. R) X- P7 x, l" {2 C, O
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183
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165
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2 M4 b, b% W3 A$ y( O% D' E
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表2 ZL2菌株正交试验方案及试验结果 . g* b" k a: a2 ]
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0 V; F2 C; V$ p6 k0 t' _3 d6 ?+ ~
分组号( [0 y/ Z7 G; _- v+ o$ ]% h
因素. ^4 \' |9 C& Y& e
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
# b& q r) n- I2 N. k6 h降解测量ρ(油)/(mg.L-1)4 Z: K# A, c* A
V' X+ x$ m* w1 a+ p( o" ], T温度/( D1 P2 q% `: d0 t; ^ X1 s2 h% ~
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; w: O( F3 B1 R0 j( `1.5 降解能力试验 配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法 用紫外介光光度法测定。 * y+ Z3 ~8 L5 Q; c' V
2 结果分析
8 L& k8 s& T, H( i l+ P2.1 优势菌筛分试验 富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
$ H U9 D; n# [2 E& w表3 4株机油降解菌形态特征
( A+ f7 g8 H, r7 a' x, o% H% g. Y4 g ]0 C" [: a' D
. z$ q ?+ P) u- J8 Y- ^* A# J v) P& g9 u6 d9 y
3 L1 p" E0 B! s% T* q; o) @
形态特征
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ZL3( u# ?! p( H4 F$ }- g+ [
ZL4# X2 y! N$ P) d. d: f
+ W1 F! M5 c7 K菌落颜色
" u1 N8 C1 ?9 V4 ?- n1 n粉红4 ?/ Y. Z3 S* g4 o, T0 G! t
淡黄
8 W+ b+ s- [( N ]" i* I淡黄
% ?7 p, Y3 C% R; b( z7 M粉红" q, e( I: B2 v$ x! {
+ B% `0 y( f1 W$ D/ {) R' X菌落形态
9 t( L$ x2 N6 d9 `不透明,微隆起,全缘,
" ^# P. ^, [! B! t3 t半透明,圆形
3 m7 ?+ w3 F- c4 D半透明,圆形,隆起,! v1 o# E1 h e/ z. h5 s
不透明,米粒状突起,2 b- s y, k9 U$ C" T% U, Z
. t; S7 g3 h. N. e2 l( `; M4 Z ( x8 I9 v7 u. V2 R+ E
光滑,有光泽
7 f, O' J6 V y光滑,较干燥6 t' S- x2 T% X& d( r, W
光滑,有光泽! D$ b1 i: j. e0 j
较湿润; E! E5 S- g$ W
. B9 K C3 s# I/ Z# [' o菌体形态$ Y3 L! j; H+ q- F# \; w
短杆
0 Y) X/ _4 K( @( r5 i, J球形
9 ~! e8 B- O3 M杆状
. V, q' M, D& I; p5 ]) I* k丝状
0 ~/ \' j% U9 m, z( b* P$ {$ t7 K9 n. i
菌体大小/μm3 A0 N! _/ U! l9 P- e
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)4 H6 \# R8 {: |6 _' Z& z" V' J
Φ0.3, F+ `2 Y! S5 n! l0 {
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)% R( i$ ?( y. u, x! ~5 `( d
0.2×(6-60)+ [ s, S/ M' \) J
" J6 M$ C) y W$ r9 E6 b+ \
革兰氏染色% t9 n0 y! Y- F) t. |
G3 k+ N/ } e: k/ c
G
& T" C/ r% f7 Q- v- X9 t$ hG
& W3 Q' v; w! g) v1 cG, e& Y* e% |& M" ~/ U
5 R, m8 ~# B, C* a0 x2 _1 g% t% ^3 `& V
初步鉴定4 S+ [+ t# R8 w, U
黄杆菌属
3 Y6 j7 B" C* d/ u, _' d/ L) Z微球菌属
9 J" i5 d- f" c* K假单胞菌属
' Y; b6 s1 R2 @9 \- H" A& d8 S酵母菌属! K4 @" C3 F. I" c' w
2.2 生长条件正交试验 ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验 向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论
7 j- q0 e/ C q* I- s ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。 ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。 ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。: J4 C8 |# T7 u# i# O
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