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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03% I- a* f) r' ^
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, X......
# P3 Z' Y# J: R7 B, }' w& I. y! \
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: U% {. z" N0 R* E/ s" f6 G8 p  L1 V9 {. m# K
  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
2 ]) t* [# z: [) u) V  yAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
- ]4 X% M& K3 q# l  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus * O3 o* ?1 n/ H0 W6 C
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 ' R# U  [1 H* f9 Q
1 材料与方法
0 O% ?$ x( n* y5 l; a2 Z$ [8 p1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 & w% u" b2 t  t* [5 Z0 n2 Q+ f
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果
0 i. @3 I9 p' K/ v# m6 B( V( p* N% ]
! p. y  y" q( V3 {: c
- _/ m  s( E, z) m) p; S6 N( w/ s
2 ~3 ~) o1 [% b3 e- E
分组号
# C& O( p) Y4 k3 H7 g因素3 A5 I( f9 P+ a/ z7 Q6 ]& A$ P
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
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7.0. ~8 h! t* S, t; U/ J' ]+ m1 T0 \
220
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30
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6
1 M8 Q  x% f1 v5 S# T3 f1 ?7 L30
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5.0
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183
5 e7 u% E" g3 [) n- ]179
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$ D) R# c1 ]( H( x7 [1 v! p: Y' @1025 E3 o: |/ t! Q
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165) Z8 \- T1 S7 V; {) p
 6 P: z8 E4 G* z6 S* N
 
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R
' S3 w, O! p" @, L. y) ~1281 n* U5 n) O# L" G6 ?1 X
44
1 _& y7 l$ n$ ^# u' R0 q8 V141 p( K' Z8 D/ J. j+ ~  ^, b, ]
 
! F" I7 O1 d+ S1 E - q( a- E; D4 i: X& G9 W$ G4 S2 \* o
表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 0 J% N& U1 o6 T8 K* S! z3 L. b
: y( }" R' I' V# |( h4 a; c
$ @% v' c+ U# d' a, Y

3 u5 A1 b. a( \7 g" x+ Y, L4 k% a7 b& @, K& V
分组号4 k' ?: n/ \: Y: ^/ Y- h
因素8 j( [7 {8 l) e4 S7 y2 r
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
9 k9 e; O  Z1 Z9 F# }0 f+ _$ V降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
. k7 _- h% R/ r+ l9 b" ?
' A2 N3 Y; y. S0 E( @4 B9 H温度/
# f: N  c" Z( Q5 q$ Aρ(油)/(mg.L-1)
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2991 B1 d2 b2 q: K0 q: U
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3 _+ W; K4 |9 ^" n/ Z, N6.0* a5 }6 O- `  U  r$ q' k/ m
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2646 y  W% A+ Q6 i- I$ f7 j
 
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73
0 U  L" }2 X4 g+ a' @2 w7 e16
' f& ~$ Z* @( ]! D! e( G- T$ K+ b: A% i25
9 X" @( K- W* ^/ a: S% O, e 
+ K: T/ w: V8 a" h: a% ?2 |" ~7 b 
8 h- \  i5 l# \1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 5 |% k* O- D8 Q+ J3 H3 I4 l
2 结果分析 0 E' V7 {0 v' Z
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 ; L2 x1 _+ Q9 s2 N2 O6 ^
表3  4株机油降解菌形态特征 0 }- X5 W# g, o- i+ D

4 I: E) T0 e& U& u  i; E" X) Q
( M( m! m* h* Z( E, a9 p+ r
. Z5 d. t5 Y) m& c1 \
! k: a1 ~% H$ \4 L形态特征
, ?" J3 N+ E  g% kZL10 F$ {8 L4 N) {6 h5 a. p
ZL2' }- a, Y& ~& a; v! Q
ZL3" S# J- [) c6 u' E+ E
ZL45 v4 I" Y) Z: j* m
" |$ b% u$ |8 w  K- _9 ^& H
菌落颜色. f/ Q! R# ?" J. z8 O
粉红# H+ @, Y' ^1 G/ z) Z* l7 h' ~
淡黄
8 s1 B! D( T7 T4 Y2 V2 P: P2 h8 w淡黄
/ u1 V2 a* d9 G3 G& s* v7 Z粉红
" x$ p$ H7 ]2 T1 X) T- d
3 c" {+ b. Y. [0 l菌落形态$ \) K$ b  r8 R2 c9 Y. E2 |
不透明,微隆起,全缘,$ t; n2 a  I0 K0 ?( t- G
半透明,圆形
6 g, \7 |2 V! O% A! ?6 l半透明,圆形,隆起,
) \' t" S- u1 Y2 L; e4 A3 c不透明,米粒状突起,
2 }5 w: [/ c+ t: J$ g6 {1 T( [3 t. h7 F) g- X3 t, ]! o' J# H
 ' C: W2 Z& X$ \$ ?  t! J  e
光滑,有光泽
) ^; i* V7 d$ d4 }  ?; h, p  X7 J光滑,较干燥- ^: u0 z" t; l7 x- s
光滑,有光泽
8 B" r& _# M0 V) y- D7 @较湿润# X$ s5 \4 B* ^" c/ G1 a

; c# Y$ b! E# d! _菌体形态2 r, [; U, ~' s6 r/ p
短杆- V2 F4 g- d: @& e# @- h
球形$ D( N+ l" [. ]$ z. L/ ^
杆状$ D8 ^( d  r% L3 ~
丝状
; }% A: y% ?/ J0 i. @; f* N: d* C, @4 F& `( K
菌体大小/μm
  G1 y) j# {1 t, f$ z& w, _. @' l(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
! u. v/ H: i; j/ m. m) VΦ0.33 P# t$ }$ d  y; h+ n
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)* I/ E% W% m2 f6 f9 Z, m: V
0.2×(6-60)# C0 h0 z; Y& a4 l8 \# a

) l9 H' \; d$ j9 ?0 ^7 p2 s革兰氏染色7 z& q; s' ^0 C; Z' L5 h; w, v
G
' W! H% r, T% t' z* fG7 f" O: ~, f6 ^# `5 e. z/ A1 \
G* \. G" i  F2 S! X  b
G
4 g8 k7 Q' F& q
' q8 Q8 Y! f' |* V2 @: r初步鉴定, q1 _. u; w( O+ T7 a: L
黄杆菌属
! y7 q+ i8 _3 ?8 l+ @5 n微球菌属- c  R2 M: v! |) [8 F) }5 @. T
假单胞菌属- z# R) m& i6 q, N+ M8 f" y4 w
酵母菌属2 v0 p5 I6 ~  ]( A9 l5 z- |3 W+ \
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 , V4 U' g4 U. @0 N

( }/ r' c0 A3 ]7 ^( |- R3 结论
3 D- |5 M! \9 Z: a  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 1 h6 }! I9 p! V5 \
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* T8 O6 f$ I2 C( T# R/ b  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。& f( J7 z4 H- |' M5 _! [
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