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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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* U2 G8 G7 n$ [2 |9 }" C' v  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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, S& V1 S( `0 x0 ~  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
; Z2 t4 N: z) d* [1 \An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) . ]$ h' _! v) p' d& E% o7 }0 q- I
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus ' ^. F( Z, l$ w  _5 T! [# u
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
: g; \' S/ q% o% n1 材料与方法
! H/ p: v# @3 U- _9 _( F; @( C1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
8 t" I5 V  ]2 T" S* p4 n+ |表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果
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降解测量ρ(油)/(mg.L-1)2 C3 z0 [9 W, U  D2 s
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pH值
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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果
* m0 n* i+ B! l4 M# W3 Z& {- @$ [; m$ m7 g; `1 z6 i& i  j4 E4 Z

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因素: N0 r1 L7 [* H
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)- H0 B- H4 ~/ w+ c3 l
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)& p0 ~5 Q% N3 j6 _2 g

1 J# Z/ [9 e6 j2 G0 f, E" O. L. n1 X温度/
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25, n" w' r' w( t) t
 , T+ Q& I1 e# C- k
 
3 y+ u; |& S& G3 ?) b3 D9 T1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
" U7 H" ^9 v7 o3 i: k2 结果分析
6 c: G2 |$ O4 L$ A2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
: ]% L2 D, _6 w0 `, f# X表3  4株机油降解菌形态特征
" c5 r. o- }  b) ^4 v' E
4 ~, n! N1 \6 \; `) \1 A/ f  r
" v, K8 m! ]( f$ O) B# _9 t/ j. W4 c0 ?% x, T3 ~! u

/ y3 M% g+ e  \3 ?$ o) J/ S) \1 r$ F形态特征/ q" R( D, H4 x* i1 V6 U. d# S
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! ]( \; g$ }( m; [/ ]/ k" f  m! R
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粉红% l1 r6 i% C# o) M
淡黄
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! }6 h9 Y$ f$ i# Z% w3 T! X( p5 s粉红
# M8 k1 q# i! a' H" S# x7 r; ]6 C. {/ ?; m! t4 C6 W
菌落形态. J; w: @" v# j, R5 s& {) R8 i
不透明,微隆起,全缘,
8 U; j. M% O" I0 q! j2 C) f% Y半透明,圆形9 v/ f8 a) u  f6 F: L' W6 x$ e
半透明,圆形,隆起,
# g( Y; h; a$ [" i" x8 `不透明,米粒状突起,
! Y4 e% f7 @! S
/ c' u7 q! }6 G. p5 Y 
6 L/ ^6 R4 S0 A# p8 E光滑,有光泽, ?+ S& n2 j2 R* v. L
光滑,较干燥
+ q7 l# N7 k$ X光滑,有光泽
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; \- R2 k! f) b- a
菌体形态
+ w$ X, y0 _' A: Z' H短杆
  x9 Y8 L7 s6 }/ Q, t  Z: Y8 [" f: D球形# {" y0 m8 Q& _/ W/ v+ j# W0 G4 x
杆状
" c) C) C+ K9 B: ?/ M丝状) e: Y& n2 f- n. W% }

" I8 t* f7 M  \8 q) l5 }菌体大小/μm
9 d/ _4 I/ h# e' s(0.3-0.8)×(0.6-1.0)7 x2 j$ w( Y# `
Φ0.3
5 g3 u; G8 s# B6 M$ H( ?& x; M(0.5-0.8)×(1.3-5.0)$ d' R: A+ {" g# L" ^; B
0.2×(6-60)
, O! t$ x: b  ], Z' }# I4 x; _
, c: e  |. ^* N5 Z  G; W8 X! M革兰氏染色
* Q" P6 `4 @  ~, Z9 _  Q1 ZG
/ F- B% K9 K2 A0 IG' I1 h! j* ?5 z7 ~, @
G2 _& Q( }* L6 I9 {
G3 B: P# {9 H! l# G% G

/ [" ?$ A- q( _, y% Q9 J, ^初步鉴定
6 |3 G- _9 G% S7 c% x3 P9 M黄杆菌属+ n% O+ v9 ^% ~1 ^% f
微球菌属
$ p+ ~  _2 J( e* P9 A假单胞菌属5 f" _; E5 K! \3 n7 t8 t6 c
酵母菌属
$ |0 j: V. ?  O! _  J2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 ( F8 W# w  @9 M2 F8 L# h  Y

9 }+ [9 x; b9 Q, F4 X3 结论 ) q; y. z8 ]6 g; P! p
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 % O! z. o) o0 S* y  m! f

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( C9 f  y( s2 Z) ]8 \  {  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。  d( v" V  U5 G9 D. N

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