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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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5 p8 k* ?5 `  p& m  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03& N! y/ ~9 [/ O8 \' K
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
  [) O, W4 Z. `/ ]An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) & v% v, }# u( `; r
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
* r: }# ]6 Y# K" J% [  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 ! F5 W8 S* j- H, z
1 材料与方法
! ^! b3 N- Y& |  G6 l/ j  f  u1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 ) T) O. o+ [3 F4 e
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 6 t% ?& C0 T9 B$ j$ ?0 e7 w5 j

1 f! I5 N" ^& n$ r, l) `+ B2 B' R+ ?/ U3 j9 L
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因素, p" }- y  P4 f5 ~) n' s
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182
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179, \* j) L/ U( B" P
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144, @# |( {6 }4 Z. z
165, s* d+ i! s+ t. ~7 M3 i8 |( {5 e
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+ f8 l2 _& l( c+ a  CR! \, |, l7 P8 U3 T0 f. Y
1281 h5 B8 W4 X5 E/ G% B0 P# O
44
* H8 _' Y# @; O; D9 P14$ n6 h" @1 e6 R3 i
 
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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 " J8 I+ a! T' F# ?  D
: }# t  N. @9 }8 a

8 J( j' `- W, I0 a9 {' j2 y, s- i, }4 A# ?" _" Z0 }+ _. p

( e- U2 j5 u9 E5 ^: L% N+ e# o分组号; r+ e2 l$ w5 W3 X
因素# {3 B  p* ?9 c, Q4 [
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)3 c, p) g  f9 g0 s# D2 |( E" }
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
2 X2 a" S6 u9 T3 y& r5 k" S2 Y. O& i; K4 b0 {
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25# A* P) t0 ^( L! N" \
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7 h! m- u$ q; [) r# y1 E$ f. z
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164 {9 c: w& ?: d: A) k  r& j
25
$ C4 e9 @" |  G; N( |% u' H- u1 Y # n8 `) B9 G7 ?$ M" ?6 R, R- f! s
 
! D& D1 p. q1 q- l/ n) \1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。   l$ \* i3 a' U+ K  b
2 结果分析 ; ]! m4 ~* o, Z. J2 {
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
5 |3 }, W! ]8 A; q+ Z6 x  p表3  4株机油降解菌形态特征 # K' ~& W' S- D

2 s8 V: r# S: h2 U" S0 i9 Y$ t  S5 F: }* I7 ^4 D& J3 G
. q  R& i# J2 R4 t& z

  L! V3 y3 y6 h! }& P/ B形态特征
7 T6 W7 m9 d6 \ZL1$ Y. n0 [. P. t" Q: A$ A$ {  p
ZL2; l) Q4 C$ s5 X! m
ZL3
; i6 U4 t' x; C3 J. {0 j* BZL4
- y; J8 K. t# n% |8 M* x, u, \
6 e" J! @( g9 X+ [5 W( z: n# s菌落颜色0 i: [  n8 f! n' m% C; s
粉红1 b7 r% K) e3 }! t+ I
淡黄
, O% A5 S: ^( ^淡黄* r) n) q1 w2 k& u
粉红4 P0 k7 }  t4 n& v. q

# i/ |0 ^; {3 v, ]# z菌落形态
- h1 r3 w' ~2 K8 c8 l% h: \0 ?不透明,微隆起,全缘,9 y8 }. E$ X3 K; H
半透明,圆形0 ~" }3 Q) X1 }' ]9 J1 U
半透明,圆形,隆起,) }0 A) }! d7 w" Q2 z+ S& j$ E
不透明,米粒状突起,
$ D- u: A! K3 @: G7 c9 N* F" q/ o& {3 D# m# i2 q1 a6 Y7 ^! |$ v
 , W; V1 M# m. }- X! w
光滑,有光泽* k4 \+ r* J5 h) L. Q7 u5 ]
光滑,较干燥
4 G4 b$ K, S+ p3 s' ], Q光滑,有光泽& N1 V1 q2 U" \  N8 _  {: M
较湿润
* E5 }6 {( b7 c& S  I  \
; ?( d4 t% e1 U# n- @: G菌体形态
3 |8 L( r5 s7 I$ W" A. F短杆
2 q9 T0 J1 |; L! v4 t: C9 W球形' X) Z: e3 t6 w7 o; Q
杆状
9 e6 A- p, }  P) b( m* k5 E: e丝状7 V9 _* B% K' |
' v$ m* S" ~# Z7 h, r5 z  s
菌体大小/μm
& Q3 @6 k3 \  K; N1 R8 F, `(0.3-0.8)×(0.6-1.0)' s7 ^' O! a% F0 D/ o& Z8 e* S8 [
Φ0.3/ b  v! i: o, d1 |9 s
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
  s, y4 p5 T0 S9 D: `9 u0.2×(6-60)
2 E  M9 q* B; T* H; M0 b) Y$ L1 Z9 V- ~5 Y* Q( f; W" M( p
革兰氏染色. j% U+ {1 \/ _1 `' s
G
  \' X) X8 ], E0 m- vG0 p* u. I! l9 n/ u, {, o
G
! I$ \9 g, E- p+ W7 \8 j9 |' V3 pG
8 ?: \1 ^9 ]& }& a7 g- |" G/ j9 d" L
初步鉴定
& ~" A( t6 j, X+ Z' U3 r  h黄杆菌属
1 ^4 o: |3 {/ a  a; U! n微球菌属) i/ e( ^& O5 D  ~$ e( m" S
假单胞菌属
5 F3 I6 E6 g8 `4 Y酵母菌属
( x* i4 B" B2 V5 L" p+ _2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论 & M  L( [/ R# x9 c3 l" A
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。2 L7 \+ X& a5 U3 l+ H6 ~
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