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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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# V2 k6 c" d0 W- U4 i! E) Q  T9 T
4 H* {8 n, m) \7 D( v1 B  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
% {5 p  J+ F' [( V  pAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) ( @8 @: F8 D) f3 ^( @7 {8 z3 l
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
& }5 Z9 ]1 I0 u/ U5 ~; u3 G4 K# E  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
5 F' O% N5 b/ m7 O" j$ R4 \- i1 材料与方法 3 S4 t$ g9 P& A9 C/ D
1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
& K5 ?7 I6 t8 c: z7 o表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 7 z2 Z2 @, n$ a2 Q3 d
: l, H1 J0 y8 @

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14
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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果
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分组号
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测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
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1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 4 ?8 X; P) B6 S: U* D) h+ k
2 结果分析 . c; B) F( K, N( E7 `
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
: G6 \" j1 S6 j( T1 p! P0 a表3  4株机油降解菌形态特征   K9 v9 Q3 u; ?) t7 K2 D
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形态特征% n- n- s3 b! j! L7 e
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菌落颜色$ W1 |6 s/ J7 B
粉红' j! t5 R1 c7 m/ t( T5 c( ]
淡黄
) Z: P9 m+ Q6 R1 z& b0 i6 i淡黄
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! }5 W: p8 j* G8 V7 Y; t' ]: k/ y! ]/ n, V
菌落形态; B9 W* s: a4 j
不透明,微隆起,全缘,
/ Y) K, K& c- A% D6 ?- _' S半透明,圆形. A5 d" p+ X0 G* b( g
半透明,圆形,隆起,
" @0 e% F- ]7 Y* D) i7 E/ M/ y不透明,米粒状突起,
1 w; a2 f8 h7 K# t- |( ]9 s9 |" v5 {* J& x# V: z. x
 
- k) |, M0 B: I# _1 g# U% @- s3 \光滑,有光泽+ [+ L) l; o- e5 g8 ]+ h: B# d
光滑,较干燥4 }, b- Y: F5 v8 R
光滑,有光泽
0 {) D9 ]% w! o1 o) D  o+ z' Q. O  f  D较湿润
. T$ w" A5 a' Y$ n# M( l" i* G" p- ?  l0 L1 }
菌体形态% f* Z" X0 o* I1 v6 P; V
短杆% l% F* m! r$ Y" f; z& }
球形
" \6 D4 s9 Y) |7 d( h8 s. i杆状5 \( w3 Y$ x; t# g9 D- U
丝状
* r" F" ?7 [' g# b# \. n% w+ m7 Q: z' Q8 K$ f, k
菌体大小/μm
' @( C5 b- J3 N. t. P! k(0.3-0.8)×(0.6-1.0)/ y* R$ \  n/ `- d9 e
Φ0.36 }# F$ q4 O6 f% Q. q% G) i
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
+ t+ y/ d' r, ^* f  ?0.2×(6-60)" i# a8 o8 I$ p2 Y# g! ^$ z
% z3 u( G# b  H3 y% R- o2 ?
革兰氏染色
9 o4 n# f! K# F# {, @G4 l$ Z, d- b5 s( C0 y' P* Z
G
. \; Y1 {1 ~8 G' V( x' x6 YG
( J8 m. A" D2 hG
. _5 p5 K# E, e" e& m! }
# T9 F( H3 X2 s6 y初步鉴定7 y* }2 u. |9 B
黄杆菌属4 }4 r' H$ Z! C* E
微球菌属2 L5 t6 D% R$ Y! h) x
假单胞菌属
* `4 q4 P, v+ r# _- Z% G& k! q酵母菌属0 ^5 z- g6 C- A
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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+ W  b3 _# i  V4 K* {  K& Q. ?3 结论 - T4 n1 `$ g3 {7 n; |3 B
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 7 s" g; F! B1 `4 \2 t) }, ?

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. O# X4 }4 k0 }( E* r( p$ k1 ^  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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